Цель исследования. Идентифицировать тип гибели эндотелиальных клеток при воздействии кальций-фосфатных бионов (КФБ) и определить, вызывают ли КФБ специфичный молекулярный ответ по основным клеточным сигнальным путям. Материал и методы. Культура иммортализованных лимфатических эндотелиальных клеток мыши линии 2H-11 экспонирована магний-фосфатным бионом (МФБ) либо сферическим или игольчатым кальций-фосфатным бионом (СКФБ и ИКФБ соответственно) в течение 24 ч, после чего выделяли белок RIPA-буфером с последующим иммуноблоттингом: 1) на эффекторные белки апоптоза (расщепленную каспазу-3 (cleaved caspase-3, cCasp-3) и расщепленную поли(АДФ-рибоза)полимеразу (cleaved poly (ADP-ribose) polymerase, cParp-1)); 2) на белки внутреннего пути апоптоза (X-связанный ингибитор апоптоза (X-linked inhibitor of apoptosis protein, Xiap), сурвивин (survivin), ингибитор активатора плазминогена (plasminogen activator inhibitor 1, Pai-1), митохондриальную сериновую протеазу HtrA2/Omi, цитохром c (cytochrome c), p53-зависимый модулятор апоптоза (p53 up regulated modulator of apoptosis, Puma)); 3) на белки основных сигнальных путей (фосфорилированную киназу, регулируемую внеклеточными сигналами (phosphorylated extracellular signal-regulated kinase, pErk), фосфорилированную митоген-активируемую протеинкиназу (phosphorylated mitogen-activated proteinkinase, pMapk), фосфорилированную киназу очаговой адгезии (phosphorylated focal adhesionkinase, pFak), фосфорилированный ядерный фактор каппа B (phosphorylated nuclear factor kappa-light-chain-enhancer of activated B cells, pNf-kB), Itch (E3 убиквитин-белковую лигазу), Gli (глиома-ассоциированный онкоген)). Оценка результата проводилась качественно (путем хемилюминесцентной детекции) и количественно (при помощи алгоритма программы ImageJ для анализа хемилюминесцентных гелей). Результаты. Как СКФБ, так и ИКФБ обладали сходным действием, кратно повышая содержание эффекторных белков апоптоза cCasp-3 и cParp-1, а также снижая уровень основного ингибитора внутреннего пути апоптоза Xiap в эндотелиальных клетках в сравнении с МФБ и контрольным чистым раствором фосфатно-солевого буфера. Напротив, содержание другого ингибитора внутреннего пути апоптоза сурвивина и антиапоптотического белка Pai-1 в экспонированных СКФБ и ИКФБ клетках было повышено предположительно вследствие активации внутриклеточного механизма отрицательной обратной связи. Не было выявлено надежного изменения уровня различных белков основных клеточных сигнальных путей между экспериментальными группами. Заключение. КФБ запускают внутренний путь апоптоза в эндотелиальных клетках, однако не вызывают специфичного молекулярного ответа по основным клеточным сигнальным путям.
1. Heiss A., Pipich V., Jahnen-Dechent W., Schwahn D. Fetuin-A is a mineral carrier protein: small angle neutron scattering provides new insight on Fetuin-A controlled calcification inhibition // Biophys. J. 2010. Vol. 99, N 12. P. 3986-3995.
2. Wu C.Y., Young L., Young D. et al. Bions: a family of biomimetic mineralo-organic complexes derived from biological fluids // PLoS One. 2013. Vol. 8, N 9. P. e75501. doi: 10.1371/journal.pone.0075501.
3. Kutikhin A.G., Velikanova E.A., Mukhamadiyarov R.A. et al. Apoptosis-mediated endothelial toxicity but not direct calcification or functional changes in anti-calcification proteins defines pathogenic effects of calcium phosphate bions // Sci. Rep. 2016. Vol. 6. P. 27255. doi: 10.1038/srep27255.
4. Pruijm M., Lu Y., Megdiche F. et al. Serum calcification propensity is associated with renal tissue oxygenation and resistive index in patients with arterial hypertension or chronic kidney disease // J. Hypertens. 2017. Vol. 35, N 10. P. 2044-2052.
5. Smith E.R., Ford M.L., Tomlinson L.A. et al. Serum calcification propensity predicts all-cause mortality in predialysis CKD // J. Am. Soc. Nephrol. 2014. Vol. 25, N 2. P. 339-348.
6. Pasch A., Block G.A., Bachtler M. et al. Blood Calcification Propensity, Cardiovascular Events, and Survival in Patients Receiving Hemodialysis in the EVOLVE Trial // Clin. J. Am. Soc. Nephrol. 2017. Vol. 12, N 2. P. 315-322.
7. Keyzer C.A., de Borst M.H., van den Berg E. et al. Calcification Propensity and Survival among Renal Transplant Recipients // J. Am. Soc. Nephrol. 2016. Vol. 27, N 1. P. 239-248.
8. Dahle D.O., Åsberg A., Hartmann A. et al. Serum Calcification Propensity Is a Strong and Independent Determinant of Cardiac and All-Cause Mortality in Kidney Transplant Recipients // Am. J. Transplant. 2016. Vol. 16, N 1. P. 204-212.
9. O’Connell K.A., Edidin M. A mouse lymphoid endothelial cell line immortalized by simian virus 40 binds lymphocytes and retains functional characteristics of normal endothelial cells // J. Immunol. 1990. Vol. 144, N 2. P. 521-525.
10. Galluzzi L., Vitale I., Aaronson S.A. et al. Molecular mechanisms of cell death: recommendations of the Nomenclature Committee on Cell Death 2018 // Cell Death Differ. 2018. Vol. 25, N 3. P. 486-541.
11. Green D.R., Oguin T.H., Martinez J. The clearance of dying cells: table for two // Cell Death Differ. 2016. Vol. 23, N 6. P. 915-926.
12. Morris G., Walker A.J., Berk M. et al. Cell Death Pathways: a Novel Therapeutic Approach for Neuroscientists // Mol. Neurobiol. 2017 Oct 19. doi: 10.1007/s12035-017-0793-y. [Epub ahead of print].
13. Holcik M., Korneluk R.G. XIAP, the guardian angel // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2001. Vol. 2, N 7. P. 550-556.
14. Van de Walle L., Lamkanfi M., Vandenabeele P. The mitochondrial serine protease HtrA2/Omi: an overview // Cell Death Differ. 2008. Vol. 15, N 3. P. 453-460.
15. Tait S.W., Green D.R. Mitochondria and cell death: outer membrane permeabilization and beyond // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2010. Vol. 11, N 9. P. 621-632.
16. Herrmann M., Schäfer C., Heiss A. et al. Clearance of fetuin-A-containing calciprotein particles is mediated by scavenger receptor-A // Circ. Res. 2012. Vol. 111, N 5. P. 575-584.
17. Kolch W. Coordinating ERK/MAPK signalling through scaffolds and inhibitors // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2005. Vol. 6, N 11. P. 827-837.
18. Mitra S.K., Hanson D.A., Schlaepfer D.D. Focal adhesion kinase: in command and control of cell motility // Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2005. Vol. 6, N 1. P. 56-68.
19. Oeckinghaus A., Hayden M.S., Ghosh S. Crosstalk in NF-kB signaling pathways // Nat. Immunol. 2011. Vol. 12, N 8. P. 695-708.
20. Aki D., Zhang W., Liu Y.C. The E3 ligase Itch in immune regulation and beyond // Immunol. Rev. 2015. Vol. 266, N 1. P. 6-26.
