Цель. Оценить уровень циркулирующих микроРНК (малых некодирующих молекул рибонуклеиновой кислоты), выявленных ранее как дифференциально экспрессирующиеся в NGS (Next Generation Sequencing)-профилях различных типов опухолей головного мозга, с использованием валидационной когорты, сформированной на базе низкотемпературного банка биологических образцов.Материал и методы. Биоархивирование плазмы крови проводили от пациентов, получавших лечение по поводу опухолей головного мозга на базе ФГБУ "НМИЦ онкологии" Минздрава России в период с апреля 2018г по декабрь 2024г. Методом полимеразной цепной реакции с предварительной обратной транскрипцией (ОТ-ПЦР) был определен уровень 10 микроРНК в образцах плазмы 40 человек. Лица, вошедшие в исследование, были разделены на 5 групп по 8 человек: с диагнозом глиобластома, астроцитома, олигодендроглиома, доброкачественная менингиома, а также условно-здоровые доноры. В исследуемых группах пациентов было 17 женщин и 15 мужчин, медиана возраста составила 52,5 лет. В контрольной группе: 7 женщин и 1 мужчина, медиана возраста — 53 года.Результаты. В плазме крови были определены уровни miR-30c-5p, miR-128-3p, miR-186-5p, miR-194-5p, miR-484, miR-19b-3p, miR-431-5p, miR-3168, let-7c-5p, miR-363-3p, отобранных по данным NGS-исследования 58 образцов плазмы крови (Гвалдин, 2024). В итоге, на валидационной когорте было выявлено разнонаправленное изменение экспрессии четырех микроРНК (miR-128-3p, miR-194-5p, miR-19b-3p, miR-363-3p), обнаруженное в исследуемых группах.Заключение. Дифференциальная экспрессия циркулирующих miR-128-3p, miR-194-5p, miR-19b-3p, miR-363-3p ассоциирована с онкогенезом опухолей головного мозга и может быть использована для их диагностики.
1. Омельчук Е. П., Тимошкина Н. Н., Росторгуев Э. Е. и др. Циркулирующие биомаркеры глиом (обзор литературы). Клиническая лабораторная диагностика. 2024; 69(8):411-20. doi:10.51620/0869-2084-2024-69-8-411-420.
2. Карандашов И. В., Гольбин Д. А., Горяйнов С. А. и др. Принципы биобанкирования и биобанки опухолей нервной системы в мировой практике. Вопросы нейрохирургии имени Н. Н. Бурденко. 2022;86(6):91-8. doi:10.17116/neiro20228606191.
3. Hasani F, Masrour M, Jazi K, et al. MicroRNA as a potential diagnostic and prognostic biomarker in brain gliomas: a systematic review and meta-analysis. Front Neurol. 2024;15:1357321. doi:10.3389/fneur.2024.1357321.
4. Ali H, Harting R, de Vries R, et al. Blood-based biomarkers for glioma in the context of gliomagenesis: a systematic review. Front Oncol. 2021;11:665235. doi:10.3389/fonc.2021.665235.
5. Гвалдин Д. Ю., Петрусенко Н. А., Росторгуев Э. Е. и др. Сравнительный анализ профиля циркулирующих микроРНК в плазме крови пациентов с глиальными опухолями мозга. Research'n Practical Medicine Journal. 2024;11(2):36-45. doi:10.17709/2410-1893-2024-11-2-3. EDN: LEHTGP.
6. Омельчук Е. П., Тимошкина Н. Н., Гвалдин Д. Ю. и др. Создание коллекции образцов плазмы для поиска диагностических биомаркеров глиальных опухолей. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2024;23(11): 4171. doi:10.15829/1728-8800-2024-4171. EDN: OLWCVE.
7. Гвалдин Д. Ю., Омельчук Е. П., Петрусенко Н. А. и др. Модели машинного обучения для дифференциальной диагностики опухолей головного мозга. Профилактическая медицина. 2025;28(9):87-93. doi:10/17116/profmed20252809187.
8. Taylor SC, Nadeau K, Abbasi M, et al. The ultimate qPCR experiment: producing publication quality, reproducible data the first time. Trends Biotechnol. 2019;37(7):761-74. doi:10.1016/j.tibtech.2018.12.002.
9. Soffietti R, Bettegowda C, Mellinghoff IK, et al. Liquid biopsy in gliomas: a RANO review and proposals for clinical applications. Neuro Oncol. 2022;24(6):855-71. doi:10.1093/neuonc/noac004.
10. Karschnia P, Smits M, Reifenberger G, et al. A framework for standardised tissue sampling and processing during resection of diffuse intracranial glioma: joint recommendations from four RANO groups. Lancet Oncol. 2023;24(11):e43850. doi:10.1016/S1470-2045(23)00453-9.
11. Kiel K, Król SK, Bronisz A, et al. MiR-128-3p–a gray eminence of the human central nervous system. Mol Ther Nucleic Acids. 2024;35(1):102141. doi:10.1016/j.omtn.2024.102141.
12. Mishan MA, Tabari MAK, Parnian J, et al. Functional mechanisms of miR‐192 family in cancer. Genes Chromosomes Cancer. 2020; 59(12):722-35. doi:10.1002/gcc.22889.
13. Pourrahimi M, Hesari M, Houshmandpour H, et al. Inducer microRNAs in the glioma development: a concise review of mechanisms and insights into targeted therapy. J Egypt Natl Canc Inst. 2025;37(1):55. doi:10.1186/s43046-025-00308-9.
14. Khayamzadeh M, Niazi V, Hussen BM, et al. Emerging role of extracellular vesicles in the pathogenesis of glioblastoma. Metab Brain Dis. 2023;38(1):177-84. doi:10.1007/s11011-022-01074-6.
15. Yang J, Yu D, Liu X, et al. LncRNA PCED1B-AS1 activates the proliferation and restricts the apoptosis of glioma through cooperating with miR-194-5p/PCED1B axis. J Cell Biochem. 2020;121(2):1823-33. doi:10.1002/jcb.29417.
16. Bi Y, Mao Y, Su Z, et al. Long noncoding RNA HNF1A-AS1 regulates proliferation and apoptosis of glioma through activation of the JNK signaling pathway via miR-363-3p/MAP2K4. J Cell Physiol. 2021;236(2):1068-82. doi:10.1002/jcp.29916.
17. Li T, Ge H, Yang Q, et al. Oncogenic role of microRNA-19b-3p-mediated SOCS3 in glioma through activation of JAK-STAT pathway. Metab Brain Dis. 2023;38(3):945-60. doi:10.1007/s11011-022-01136-9.
18. Wang C, Chen Y, Wang Y, et al. Inhibition of COX-2, mPGES-1 and CYP4A by isoliquiritigenin blocks the angiogenic Akt signaling in glioma through ceRNA effect of miR-194-5p and lncRNA NEAT1. J Exp Clin Cancer Res. 2019;38(1):371. doi:10.1186/s13046-019-1361-2.
19. Zhao H, Wang Y, Liang C, et al. LncRNA FOXD3-AS1/miR-128-3p axis-mediated IGF2BP3 in glioma stimulates cancer angiogenesis and progression. Folia Neuropathol. 2023;61(2):168-84. doi:10.5114/fn.2023.126862.
20. Fan B, Su B, Song G, et al. miR-363-3p induces EMT via the Wnt/β-catenin pathway in glioma cells by targeting CELF2. J Cell Mol Med. 2021;25(22):10418-29. doi:10.1111/jcmm.16970.
21. Zhang X, Wei C, Li J, et al. MicroRNA-194 represses glioma cell epithelial-to-mesenchymal transition by targeting Bmi1. Oncol Rep. 2017;37(3):1593-600. doi:10.3892/or.2017.5376.
22. Jing Y, Shang-Guan HC, Cai J, et al. Hsa_circ_0059511 promote glioma cell proliferation and migration through hsa-miR-194-5p/HBEGF axis. Cancer Cell Int. 2025;25(1):219. doi:10.1186/s12935-025-03815-w.
23. Jiang G, Dong H, Dong Y, et al. Long non-coding RNA Unigene56159 promotes glioblastoma multiforme cell proliferation and invasion through negatively regulating microRNA-194-5p. Mol Med Rep. 2020;21(2):768-76. doi:10.3892/mmr.2019.10852.
