Цель. Оценить сохранность антител класса IgG при долгосрочном хранении образцов сыворотки крови на примере специфических к вирусам кори и краснухи антител.Материал и методы. В исследовании использованы образцы сыворотки крови из коллекции отдела эпидемиологии ФГБУ НИЦЭМ им. Н. Ф. Гамалеи Минздрава России, которые были исследованы на наличие антител IgG к вирусам кори и краснухи сразу по поступлению в лабораторию, заморожены и хранились при температуре -70о C (n=180). Повторное исследование образцов проводили по прошествии 20 мес. (n=90) и 6 лет (n=90).Результаты. При повторном исследовании после 20 мес. хранения имело место снижение среднего уровня антител к вирусу кори на 13,1% (р<0,05) — от 0,36 (0,08-1,21) до 0,31 (0,02-1,2) МЕ/ мл и на 11,8% (р<0,05) — от 151,4 (45-235) до 133,5 (72-198) МЕ/ мл к вирусу краснухи; р<0,05 в обоих случаях. При этом количество серонегативных образцов не изменилось. После 6-летнего периода хранения средний уровень антител в отношении кори снизился на 33,8% (р<0,05) — от 0,72 (0,4-1,79) до 0,34 (0,18-1,14) МЕ/мл и только два образца стали серонегативными. Показано, что чем выше был уровень IgG в нативных образцах, тем более было выражено его снижение при повторном исследовании.Заключение. Хранение образцов сыворотки крови в биобанке в течение 20 мес. при температуре -70о C обеспечивает сохранность IgG к вирусам кори и краснухи, и является основой достоверности результатов будущих исследований.
1. Семененко Т.А., Акимкин В. Г. Сероэпидемиологические исследования в системе надзора за вакциноуправляемыми инфекциями. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2018;2:87-94. doi:10.36233/0372-9311-2018-2-87-94.
2. Ноздрачева А.В., Грицик А.А., Кузин С.Н. и др. Оценка фактической восприимчивости отдельных групп декретированного населения к вирусам кори, краснухи и эпидемического паротита. Вестник РГМУ. 2017;5:54-8.
3. Семененко Т.А., Ананьина Ю.В., Боев Б.В. и др. Банки биологических ресурсов в системе фундаментальных эпидемиологических и клинических исследований. Вестник Российской академии медицинских наук. 2011;10:5-9.
4. Henderson MK, Goldring K, Simeon-Dubach D. Advancing professionalization of biobank business operations: A worldwide survey. Biopreserv Biobank. 2019;17:71-5. doi:10.1089/bio.2018.0079.
5. Долудин Ю.В., Борисова А. Л., Покровская М. С. и др. Современные передовые практики и рекомендации по биобанкированию. Клиническая лабораторная диагностика. 2019;64(12):769-76. doi:10.18821/0869-2084-2019-64-12-769-776.
6. Покровская М. С., Борисова А. Л., Сивакова О.В. и др. Управление качеством в биобанке. мировые тенденции и опыт биобанка ФГБУ "НМИЦ профилактической медицины" Минздрава России. Клиническая лабораторная диагностика. 2019;64(6):380-4. doi:10.18821/0869-2084-2019-64-6-380-384.
7. Anisimov SV, Granstrem OK, Meshkov AN, et al. National association of biobanks and biobanking specialists: new community for promoting biobanking ideas and projects in Russia. Biopreserv Biobank. 2021;19(1):73-82. doi:10.1089/bio.2020.0049.
8. Schultze AE, Irizarry AR. Recognizing and Reducing Analytical Errors and Sources of Variation in Clinical Pathology Data in Safety Assessment Studies. Toxicol Pathol. 2017;45(2):281-7. doi:10.1177/0192623316672945.
9. Козлова В. А., Метельская В.А., Покровская М. С. и др. Изучение стабильности биохимических маркеров при непрерывном длительном хранении сыворотки крови и при однократном размораживании. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2020;19(6):2736. doi:10.15829/1728-8800-2020-2736.
10. Verberk IM, Nossent EJ, Bontkes HJ, et al. Preanalytical sample handling effects on blood cytokine levels: quality control of a COVID-19 biobank. Biomark Med. 2021;15(12):987-97. doi:10.2217/bmm-2020-0770.
11. Vincent FB, Nim HT, Lee JPW, et al. Effect of storage duration on cytokine stability in human serum and plasma. Cytokine. 2019;113:453-7. doi:10.1016/j.cyto.2018.06.009.
12. Peakman TC, Elliott P. The UK Biobank sample handling and storage validation studies. Int J Epidemiol. 2008;37:1-26. doi:10.1093/ije/dyn019.
13. Ноздрачева А. В., Асатрян М. Н., Рыбак Л. А. и др. Совершенствование эпидемиологической диагностики в системе надзора за корью при помощи новых методов информационного обеспечения. Эпидемиолоия и инфекционные болезни. Актуальные вопросы. 2022;2:12-9. doi:10.18565/epidem.2022.12.2.12-9.
14. Ноздрачева А.В., Асатрян М. Н., Рыбак Л.А. и др. Совершенствование информационного обеспечения расследования случаев кори с применением новых программных средств. Санитарный врач. 2022;5:316-25. doi:10.33920/med08-2205-01.
15. Elliott P, Peakman TC. UK Biobank. The UK Biobank sample handling and storage protocol for the collection, processing and archiving of human blood and urine. Int J Epidemiol. 2008;37(2):234-44. doi:10.1093/ije/dym276.
16. Ноздрачева А.В., Семененко Т.А. Состояние популяционного иммунитета к кори в России: систематический обзор и метаанализ эпидемиологических исследований. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2020;97(5):445-57. doi:10.36233/0372-9311-2020-97-5-7.
17. Ноздрачева А.В., Семененко Т.А., Асатрян М. Н. и др. Иммунологическая восприимчивость населения мегаполиса к кори на этапе ее элиминации. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика. 2019;18(2):18-26. doi:10.31631/2073-3046-2019-18-2-18-26.
18. Giavarina D, Lippi G. Blood venous sample collection: Recom - mendations overview and a checklist to improve quality. Clin Biochem. 2017;50(10-11):568-73. doi:10.1016/j.clinbiochem.2017.02.021.
19. Lippi G, Guidi GC, Mattiuzzi C, et al. Preanalytical variability: the dark side of the moon in laboratory testing. Clin Chem Lab Med. 2006;44(4):358-65. doi:10.1515/CCLM.2006.073.
20. Kang F, Li W, Xia X, et al. Three years’ experience of quality monitoring program on pre-analytical errors in china. J Clin Lab Anal. 2021;35(3):e23699. doi:10.1002/jcla.23699.
